6、诊断
受感染的猪应进行尸检。同一个生产批次猪的体重可能并不均匀。通常可观察到局部区域发生轻度或偶发严重的结肠炎。使用特异性抗体进行免疫组化染色，或使用特异性寡核苷酸探针的荧光原位杂交技术(Fluorescence in situ hybridization，FISH)能用于确认毛肠短状螺旋体以黏附在结肠肠细胞表面的形式存在于膨胀的肠道隐窝，偶尔出现在固有层。
PIS/PCS的确诊需要出现毛肠短状螺旋体，但能从粪便中分离获得并不总是与腹泻或者附着在上皮有关，其重要性需在完整的诊断调查背景下给予解释。从结肠壁获得的拭子用于准备相差显微镜的湿涂片，或将它们固定后使用革兰氏染色观察。CVS培养基用于分离毛肠短状螺旋体较好，而BJ培养基可能抑制毛肠短状螺旋体的生长。
诊断通常使用特异性PCR检测进行，靶基因是16SrRNA、23SrRNA或nox基因。双重和多重PCR有时还能同时检测其它肠道病原体。将螺旋体定量化的实时PCR试验检测螺旋体也已有报道。限制性片段长度多态性(restrictionfragment length polymor-Phism，RFLP)分析可用于鉴定毛肠短状螺旋体分离株。使用针对毛肠短状螺旋体特定外膜蛋白产生的单抗进行的间接荧光抗体检测，具有用于粪便诊断的潜力，但基于单抗从粪便中对毛肠短状螺旋体进行免疫磁珠分离，与培养后使用 PCR 检测相比，并不能够提高检测的敏感性。迄今为止，还没有常规的商业检测可用来检测毛肠短状螺旋体菌种特异性血清抗体。
7、防控
抗生素治疗可用于减少毛肠短状螺旋体感染，维持猪的生产性能，同时提高猪的福利。此外，近期引进未受感染的猪、改变饲粮或出现其它应激因素，可能需要预防患病率的突然上升。受感染的猪应通过饮水给药或饲料投药进行治疗。尽管有关毛肠短状螺旋体体外抗菌素药敏性的信息有限，很多对猪痢疾短螺旋体有效的抗菌素在进行对毛肠短状螺旋体分离株有效性的检测时，已表现出低水平的最低抑菌浓度(minimum inhibitory concentration，MIC)，包括泰妙菌素、伐奈莫林、卡巴氧、地美硝唑，其次是林可霉素。几乎没有菌株被发现对泰乐菌素易感，对某些抗生素具有抗性已有记录，包括泰妙菌素。奥喹多斯可能是一种有效的预防药物，其对毛肠短状螺旋体的MIC值，从饲料中添加100mg/kg<1.0μg/mL奥喹多斯的猪群中分离不到毛肠短状螺旋体。
限制猪接触污染环境的管理策略能降低PIS/PCS的影响。更换连续流动系统，并使用全进全出系统能降低感染风险。因为有储存宿主(如野鸟)的存在，所以避免毛肠短状螺旋体进入猪群是困难的。目前，尚无有效的疫苗用于预防毛肠短状螺旋体病。有一种自体疫苗能诱导全身性的抗体滴度，但攻毒后猪仍会被毛肠短状螺旋体定值并发生腹泻。
(审核编辑: 猪猪侠)
